半岛bd体育手机客户端 介绍
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定 测定意义 辅酶ⅠNAD(H)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，NAD+是糖酵解(EMP)和三羧酸循环(TCA)的主要氢受体，生成的 NADH 经呼吸电子链(ETC)传递把电子交给氧， 在合成 ATP 的同时，形成大量的 ROS，同时 NADH 再生为 NAD+。糖、脂、蛋白质三大代谢物质分解中的氧化反应绝大部分通过这一体系完成。NAD(H)含量和 NADH/NAD+比值的高低可用于评价糖酵解和 TCA 循环的强弱。较高的 NAD(H)及 NADH/NAD+比值说明细胞呼吸耗氧量较高，处于过氧化状态。此外，NADH/NAD+比值升高也可抑制糖酵解和 TCA 循环。另外，NAD+降解产物对细胞信号传导、代谢和基因表达等具有重要的调控作用。 测定原理 分别用酸性和碱性提取液提取样品中 NAD+和 NADH，NADH 通过 PMS 的递氢作用，还原氧化型噻唑蓝(MTT)为甲瓒，在 570nm 下检测吸光值；而 NAD+可被乙醇脱氢酶还原为NADH，进一步采用 MTT 还原法检测。 需自备的半岛游戏平台官网入口网址 和用品 酶标仪、台式离心机、移液器、96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。 试剂的组成和配制 酸性提取液：液体 50mL×1 瓶，4℃保存； 碱性提取液：液体 50mL×1 瓶，4℃保存； 试剂一：液体 10 mL×1 瓶，4℃保存； 试剂二：液体 3 mL×1 瓶，4℃保存； 试剂三：粉剂×1 瓶，-20 ℃保存，用时加入 3mL 蒸馏水，混匀，用不完的试剂 4℃保存一周； 试剂四：粉剂×1 瓶，4 ℃保存，用时加入 3mL 蒸馏水，混匀，用不完的试剂 4℃保存一周； 试剂五：液体 3.6mL×1 瓶，4 ℃保存； 试剂六：液体 30mL×1 瓶，4 ℃保存； 试剂七：液体 50mL×1 瓶，4 ℃保存。 NAD+和 NADH 的提取 1 血清(浆)中 NAD+和 NADH 的提取NAD+的提取：按照血清(浆)体积(mL)：酸性提取液体积(mL)为 1：5～10 的比例(建议取约 0.1mL 血清(浆)，加入 1mL 酸性提取液)，95℃水浴 5min(盖紧，以防止水分散失)； 冰浴中冷却后，10000g 4 ℃离心 10min；取 500μL 上清液，加入 500μL 碱性提取液使之中和，混匀，10000g 4 ℃离心 10min，取上清，置冰上待测。 NADH 的提取：按照血清(浆)体积(mL)：碱性提取液体积(mL)为 1：5～10 的比例(建议取约 0.1mL 血清(浆)，加入 1mL 碱性提取液)，95℃水浴 5min(盖紧，以防止水分散失)； 冰浴中冷却后，10000g 4 ℃离心 10min；取 500μL 上清液，加入 500μL 酸性提取液使之中和，混匀，10000g 4 ℃离心 10min，取上清，置冰上待测。 2组织中NAD+和NADH的提取 NAD+的提取：按照组织质量(g)：酸性提取液体积(mL)为 1：5～10 的比例(建议取约 0.1g 组织，加入 1mL 酸性提取液)，冰浴研磨，95℃水浴 5min(盖紧，以防止水分散失)；冰浴中冷却后，10000g 4 ℃离心 10min；取 500μL 上清液，加入 500μL 碱性提取液使之中和， 混匀，10000g 4 ℃离心 10min，取上清，置冰上待测。 NADH 的提取：按照组织质量(g)：碱性提取液体积(mL)为 1：5～10 的比例(建议取约 0.1g 组织，加入 1mL 碱性提取液)，冰浴研磨，95℃水浴 5min(盖紧，以防止水分散失)；冰浴中冷却后，10000g 4 ℃离心 10min；取 500μL 上清液，加入 500μL 酸性提取液使之中和， 混匀，10000g 4 ℃离心 10min，取上清，置冰上待测。 3细胞或细菌中NAD+和NADH的提取 NAD+的提取：先收集细胞或细菌到离心管内，弃上清，按照细菌或细胞数量(104 个)：酸性提取液体积(mL)为 500～1000：1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 酸性提取液)， 超声波破碎(冰浴，功率 20%或 200W，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次)，95℃水浴 5min(盖紧，以防止水分散失)；冰浴中冷却后，10000g 4 ℃离心 10min；取 500μL 上清液，加入 500μL 碱性提取液使之中和，混匀，10000g 4 ℃离心 10min，取上清，置冰上待测。 NADH 的提取：先收集细胞或细菌到离心管内，弃上清，按照细菌或细胞数量(104 个)：碱性提取液体积(mL)为 500～1000：1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 碱性提取液)，超声波破碎(冰浴，功率 20%或 200W，超声 3s，间隔 10s，重复 30 次)，95℃水浴 5min(盖紧，以防止水分散失)；冰浴中冷却后，10000g 4 ℃离心 10min；取 500μL 上清液，加入 500μL 酸性提取液使之中和，混匀，10000g 4 ℃离心 10min，取上清，置冰上待测。 测定步骤： 1、 分光光度计或酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 570nm，蒸馏水调零。 2、 加样表(在 1.5mL 棕色 EP 管中按下表依次加样)：
充分混匀，静置 5min 后，20000g，25℃离心 5min，弃上清，沉淀中加入：
混匀，取 200μL 转移至微量石英比色皿或 96 孔板中，570nm 下读取对照吸光值 A1 和测定管吸光值 A2，计算△A=A2-A1。 注意事项 1、如果一次性测定样本数较多，可将试剂一、二、三和四按比例配成混合液。 2、对照管和测定管的测定步骤的区别：对照管加完试剂一、二、三、四和五后必须马上加试剂六；测定管加完试剂一、二、三、四和五后必须反应 20min 后再加试剂六。 3、反应过程中注意避光。 4、若NAD+测定中△A(A2-A1)≤0.0302，NADH测定中△A(A2-A1)≤0.0222，说明样本中辅酶含量较低，已低于检测限，可做如下调整：(1)将测定管避光静置时间20min延长到60min；(2)在提取阶段增加取样量，即取0.2g样本或0.2mL样本加入1mL提取液。 5、由于每一个测定管需要设一个对照管，本试剂盒 100 管保证测 48 个 NAD+或 NADH. NAD+和 NADH 含量的计算 (一) NAD+含量的计算 标准条件下的回归曲线为 y = 0.1475x + 0.0302，R2 = 0.9978；其中 y 为△A，x 为 NAD+浓度nmol/mL 1、血清(浆)中 NAD+含量计算 NAD+含量(nmol/mL)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1) ]÷(V3×V1÷V2)=135.6×(△A -0.0302) 2、组织、细菌或细胞中 NAD+含量计算 (1)按样本蛋白浓度计算 NAD+ (nmol/mg prot)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(V1×Cpr)= 6.8×(△A -0.0302)÷Cpr (2)按样本鲜重计算 NAD+ (nmol/g 鲜重)= [(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(W×V1÷V2)= 13.6×(△A -0.0302)÷W (3)按细菌或细胞密度计算 NAD+ (nmol/104cell)=[(△A -0.0302)÷0.1475×V1)]÷(500×V1÷V2)=0.027×(△A -0.0302) (二)NADH 含量的计算 标准条件下的回归曲线为 y = 0.1404x + 0.0222，R2 = 0.9976；其中 y 为△A，x 为 NADH 浓度 nmol/mL 1、血清(浆)中 NADH 含量计算 NADH 含量(nmol/mL)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 142.5×(△A -0.0222) 2、组织、细菌或细胞中 NADH 含量计算 (1)按样本蛋白浓度计算 NADH (nmol/mg prot)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(V1×Cpr)= 7.1×(△A -0.0222)÷Cpr (2)按样本鲜重计算 NADH (nmol/g 鲜重)=[(△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(W×V1÷V2)= 14.2×(△A -0.0222)÷W (3)按细菌或细胞密度计算 NADH (nmol/104cell)= [ (△A -0.0222)÷0.1404×V1) ]÷(500×V1÷V2)=0.028×(△A -0.0222) V1：加入反应体系中样本体积，0.02mL；V2：加入提取液体积，2mL；V3：加入血清(浆) 体积：0.1mL；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL； W：样本质量，g；500：细胞或细菌总数，500 万。 注意：最低检测限为 0.1nmol/mL或0.1nmol/g鲜重或0.001nmol/mg prot |
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